CONTENIDO EXTRA – ERRORES EN LAS MUESTRAS.
Grupo 3
– Imagen 1:
Riñón de cordero
Orceína 10x – Grupo 3
En la imagen microscópica se observa principalmente una rotura tisular en la zona destacada, donde se observa una discontinuidad del tejido que interrumpe la arquitectura
natural. Este tipo de alteración suele originarse durante el proceso de corte en el microtomo, especialmente cuando la cuchilla no está en óptimas condiciones o incluso
cuando se ejerce una presión excesiva sobre la muestra durante el montaje o mediante su manipulación.
– Imagen 2:
Riñón de cordero
Tricrómico de Masson 10x – Grupo 3
En esta imagen se observa un ligero plegamiento del tejido. Este tipo de alteración puede producirse durante el extendido del tejido sobre el portaobjetos. Aunque el plegamiento
puede generar zonas con variaciones en la intensidad de la tinción, en este caso es leve y no interfiere de manera significativa con la evaluación de las estructuras.
– Imagen 3:
Cerebro de cordero
PAS Azul Alcián 10x – Grupo 3
En la imagen microscópica se observa principalmente una rotura tisular en la zona destacada, donde se observa una discontinuidad del tejido que interrumpe la arquitectura
natural. Este tipo de alteración suele originarse durante el proceso de corte en el microtomo, especialmente cuando la cuchilla no está en óptimas condiciones o incluso
cuando se ejerce una presión excesiva sobre la muestra durante el montaje o mediante su manipulación.
También como hallazgo importante es la posible separación entre capas del tejido, esto se debe a problemas en la fijación o inclusión, y puede favorecer que las capas se despeguen durante el proceso del corte. Dando como resultado desprendimientos entre regiones teñidas de forma distinta.
– Imagen 4:
Riñón de cordero
Rojo congo 20x – Grupo 3
En la imagen se observa una tinción inadecuada. Esta alteración se debe a un problema técnico durante el procesamiento de la muestra, como tiempos de tinción insuficientes o un
lavado excesivo, lo que impide la correcta fijación del tinte en las estructuras tisulares.
Como consecuencia, la intensidad de la tinción es menor, dificultando la identificación de las estructuras.
– Imagen 5:
Piel de cordero
Orceína 20X – Grupo 3.
En la imagen microscópica se observan en primer lugar roturas y fragmentaciones del tejido, evidenciadas por discontinuidades en la epidermis y la dermis, con áreas donde la arquitectura normal de la piel se encuentra interrumpida. Estas alteraciones suelen producirse durante el proceso de corte en el microtomo, especialmente cuando la cuchilla no está en buenas condiciones, cuando el bloque de parafina tiene una dureza inadecuada o cuando el tejido no fue correctamente fijado. Una fijación deficiente puede volver el tejido más frágil, favoreciendo desgarros y desprendimientos durante la manipulación y el montaje.
En segundo lugar, se aprecia una sobretinción con orceína, ya que la coloración es excesivamente oscura en comparación con lo esperado. Esta intensidad elevada dificulta la correcta visualización y diferenciación de las fibras elásticas y del resto de las estructuras dérmicas. La sobretinción puede deberse a un tiempo prolongado de exposición al colorante, a una concentración elevada del mismo o a un lavado insuficiente en la fase de diferenciación.
Por último, se identifican elementos artefactuales propios de la tinción, como pequeños depósitos o precipitados del colorante que no corresponden a estructuras histológicas normales de la piel.
Estos artefactos pueden originarse por una filtración inadecuada del colorante, por su secado parcial sobre la lámina o por un enjuague deficiente tras la tinción, generando partículas que pueden confundirse con componentes tisulares pero que carecen de organización estructural.
– Imagen 6:
Timo de cordero
Hematoxilina de Mayer y Eosina 40x – Grupo 3
Se observan roturas tisulares a lo largo de toda la muestra, donde hay discontinuidades del tejido que interrumpen la arquitectura natural. Este tipo de alteración suele originarse durante el proceso de corte en el microtomo, especialmente cuando la cuchilla no está en óptimas condiciones o incluso cuando se ejerce una presión excesiva sobre la muestra durante el montaje o mediante su manipulación.
En segundo lugar, se aprecia una sobretinción, ya que la coloración es excesivamente oscura en comparación con lo esperado. Esta intensidad elevada dificulta la correcta visualización y diferenciación de las estructuras. La sobretinción puede deberse a un tiempo prolongado de exposición al colorante, a una concentración elevada del mismo o a un lavado insuficiente en la fase de diferenciación.
Además, se puede observar que la muestra no se distingue con total nitidez. Esto puede deberse a que el objetivo está sucio y es necesario limpiarlo o a la vibración del soporte del microscopio o un ajuste incorrecto de la distancia focal entre la óptica y el plano de la película. Aparte de esto, se debe revisar que el grosor de la muestra es el adecuado y que el cubreobjetos está intacto y limpio. Se debe comprobar por último que el portaobjetos está en la orientación adecuada.
– Imagen 7:
Timo de cordero
Rojo congo 10x – Grupo 3
En la imagen se observa una tinción inadecuada. Esta alteración se debe a un problema técnico durante el procesamiento de la muestra, como tiempos de tinción insuficientes o un lavado excesivo, lo que impide la correcta fijación del tinte en las estructuras tisulares. Como consecuencia, la intensidad de la tinción es menor, dificultando la identificación de las estructuras.